Duplicación de Picos

¡Hola!

Tengo un problemilla con el cromatógrafo iónico.
Acabo de cambiar la columna (Shodex IC SI-90 4E)  - y con esto descarto problemas de fouling - y me aparecen picos duplicados después de cada pico principal.

Así:

Si paso una disolución de NaCl obtengo:

 Como eluyente utilizo el recomendado por el fabricante de la columna para aniones (1.8 mM Na2CO3 + 1.7 mM NaHCO3) a 1 mL/min y 40ºC, con un Loop de 20 microL y columna supresora de aniones.

Paso óptico

Utilizando el kit 1.005980.0001 con el fotómetro de filtros Nova 60 obtengo valores totalmente dispares para la misma muestra en función de la utilización de una cubeta de 10, 20 ó 50 mm, disminuyendo el resultado en función del paso óptico.

Así, por ejemplo, para una muestra preparada de 1.0 ppm de Cl2 libre obtengo los valores de 1.0 (cubeta de 10 mm), 0.86 (cubeta de 20 mm) y 0.82 (cubeta de 50 mm).

Estamos hablando de medida a 550 nm (lo digo por el tipo de vidrio de las cubetas, que entiendo no influye).

Gracias por vuestras aportaciones.

Cifras significativas con excel

Hola a todos/as, 

No se si os ha pasado que en vuestro laboratorio aparezca en las auditorías el tema de las cifras significativas. Es un tema un poco especial ya que implica un cambio de mentalidad y un problema informático.

Además de la teoría (que hay para aburrirse en internet) está el problema de programar no solo las cifras significativas del resultado si no el de obtener una incertidumbre con una cifra decimal más al resultado. Yo he encontrado un par de soluciones más o menos elegantes, que cuando tenga más claras las pondré en el blog, pero me gustaría conocer vuestra opinión o experiencia.

Saludos.

Criterios aceptación/rechazo

Hola!

Alguien me puede decir qué criterios de aceptación/rechazo aplican a los procedimientos de ensayo de microbiología, más específicamente criterios de a/r de resultados.

Gracias

Recuento para establecer VR de cepas

Hola a todos.

Me gustaría lanzaros una pregunta.

Yo tengo cepas de reserva congeladas. Cuando quiero realizar un control interno de recuperación, saco la cepa del congelador y la revivifico en TSB 24H a 37ºC (de manera general). Cuando ha transcurrido ese tiempo, realizo una batería de diluciones, desde la cero que sería el tubo de TSB, hasta la -7. Una vez que tengo todas estas diluciones cuantifico la cepa sembrando cinco placas de 1 ml de los tubos de diluciones -7, -6 y -5.

Es decir, del tubo -7 siembro cinco placas con un volumen de 1 ml del tubo en TSA. Asi hago tb con el tubo de dilución -6 y -5.

Estas placas las incubo 24h a 37ºC. Transcurrido ese tiempo realizo el recuento de las placas. Supongamos que mis recuentos han sido los siguientes:

- tubo dilución -7: 17, 8, 18, 15 y 23. La media de esto me daría 16 ufc/ml
- tubo de dilución -6: 177, 178, 177, 180 y 180. La media es 180 ufc/ml

Para cuantificar la cepa, lo que hay en cada tubo, además realizo la media ponderada de los dos datos anteriores, es decir, 160 + 180 = 170 ufc/ml en el tubo -6. A partir de ahí determino que:

- tubo -7: contiene 17 ufc/ml
- tubo -6: contiene 17e1 ufc/ml
- tubo -5: contiene 17e2 ufc/ml
- tubo -4: contiene 17e3 ufc/ml

y así sucesivamente hasta llegar a la dilución 0.


Me gustaría saber si estos cálculos están bien realizados? o el dato final se calcula utilizando la formula de recuento que hay en la norma 7218?

Os lo digo por que antes de mi auditoría, yo hubiera cogido la dilución -6 y mi valor hubiera sido la media de las cinco placas de la dilución. Tras auditarme Doña Concha Carbonell, aplico lo descrito anteriormente por que ella así me lo exige.

De hecho os lanzo ésta pregunta porque me están pidiendo aclaraciones al PAC presentado y una de ellas es sobre este tema.

Os agradecería mucho vuestra ayuda

Muchas gracias